批准中国动物卫生与流行病学中心等9家单位申报的非洲猪瘟病毒（P72/CD2v/MGF）三重荧光PCR检测试剂盒等2种兽药产品注册
一、非洲猪瘟病毒（P72/CD2v/MGF）三重荧光PCR检测试剂盒说明书和内包装标签
（一）非洲猪瘟病毒（P72/CD2v/MGF）三重荧光PCR检测试剂盒说明书
通用名 非洲猪瘟病毒（P72/CD2v/MGF）三重荧光PCR检测试剂盒
【作用与用途】用于全血、血清、淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体、肌肉、唾液、、口鼻拭子、肛拭子和环境拭子等样品中的非洲猪瘟病毒P72基因、CD2v基因和MGF 505–1R基因的检测。
1.1.2 拭子样品 口鼻拭子、肛拭子和环境拭子浸入5ml PBS缓冲液中。
1.1.3 病死猪剖检样品或屠宰场剖检样品 采集死猪的淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体、肌肉等组织样品。2～8℃低温运至实验室用于检测。
1.2.1 活猪样品处理方法 直接取200μL全血、血清、唾液、进行核酸提取。
1.2.2 淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体、肌肉等组织样品处理方法 取50mg的组织块放入盛有0.5ml PBS缓冲液的研磨管中，6000r/min振荡研磨45s，制成约10%的组织匀浆液，5000r/min离心5分钟，取200μL上清液进行核酸提取。
1.2.3 拭子样品处理方法 振荡数次，取200μL上清液进行核酸提取。
1.2.4 样品核酸提取 采用DNA纯化试剂盒或自动核酸提取仪提取各类样品中的核酸。
1.3.1 将引物探针（棕色管）和酶反应液瞬时离心后，将酶反应液全部移至引物探针（棕色管）中，颠倒混匀6次，充分混匀，配制成PCR反应液。
1.3.2 根据检验测试样品数量每个PCR反应管加入20μL PCR反应液；先取5μL阴性对照、再取5μL待检 DNA、最后取5μL阳性对照（充分混匀）分别加到不同的PCR反应管中，加样结束后应盖紧PCR反应管，每个PCR反应管内液体的体积为25μL。
1.4 PCR反应 加样后将PCR反应管瞬时离心，然后置于荧光PCR仪内，进行如下反应：
37℃孵育2分钟；95℃预变性20秒；95℃变性10秒，60℃延伸30秒，共40个循环；设置60℃收集FAM、VIC与Cy5荧光信号。
1.5 结果分析 采用仪器设施默认的自动分析方法，计算P72基因、CD2v基因和MGF基因荧光PCR反应Ct值。
2.1 结果的有效性 FAM信号、VIC信号和Cy5信号通道下，阳性对照同时应出现典型扩增曲线，且阴性对照无典型扩增曲线或无Ct值，则试验成立；否则试验不成立。
2.2.1 非洲猪瘟病毒P72基因 FAM信号通道下，当样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，判定为非洲猪瘟病毒P72基因阳性。当样品的扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒P72基因阴性；当样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒P72基因可疑；对初步判定阴性样品或可疑样品应再进行1次复检，做3个重复反应，若1、2或3个重复反应的Ct值＜40，且出现典型的扩增曲线，最终判定为非洲猪瘟病毒P72基因阳性，扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，最终判定为非洲猪瘟病毒P72基因阴性。
2.2.2 非洲猪瘟病毒CD2v基因 VIC信号通道下样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，判定为非洲猪瘟病毒CD2v基因阳性。当样品的扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒CD2v基因阴性；当样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒CD2v基因可疑；对初步判定阴性样品或可疑样品应再进行1次复检，做3个重复反应，若1、2或3个重复反应的Ct值＜40，且出现典型的扩增曲线，最终判定为非洲猪瘟病毒CD2v基因阳性，扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，最终判定为非洲猪瘟病毒CD2v基因阴性。
2.2.3 非洲猪瘟病毒MGF基因 Cy5信号通道下样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，判定为非洲猪瘟病毒MGF基因阳性。当样品的扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒MGF基因阴性；当样品的扩增结果有典型的扩增曲线时，可初步判定为非洲猪瘟病毒MGF基因可疑；对初步判定阴性样品或可疑样品应再进行1次复检，做3个重复反应，若1、2或3个重复反应的Ct值＜40，且出现典型的扩增曲线，最终判定为非洲猪瘟病毒MGF基因阳性，扩增结果无Ct值或无典型的扩增曲线时，最终判定为非洲猪瘟病毒MGF基因阴性。
（2）伯乐荧光定量PCR仪（CFX–96）需与阳性对照检测的荧光信号和Ct值同步进行分析。
（3）罗氏480荧光定量PCR仪（LightCycler480 II）进行结果分析时需选择“Abs Quant/Fit Points”分析方法，并将“Background”设置为“3–15”或通过建立颜色补偿文件再对荧光PCR扩增结果进行分析。
（6）酶反应液、引物探针配置成的PCR反应液对温度敏感容易失活，使用时应置于冰上，使用后应立即冻存，每盒反应液冻融次数不宜超过3次。
（7）扩增试剂准备时应按阴性对照、待检核酸、阳性对照的顺序加入PCR反应管中。
（8）吸取反应液时，应尽可能的避免产生气泡；加样结束后应盖紧反应管，以免液体蒸发造成结果不准确。
（9）处理样品用器械及废弃物品应高压灭菌。检验测试过程中使用过的吸头，应直接打到盛有10%84消毒液的带盖废物缸内。检测结束的PCR反应管，严禁开盖不得高压处理。
（10）工作台及各种试验用品应定期清洁并用10%84消毒液或紫外灯进行防污染处理。
（11）各区域物品均为专用，不得交叉使用，以免污染。检测结束后，应立即对工作台进行清洁。
（二）非洲猪瘟病毒（P72/CD2v/MGF）三重荧光PCR检测试剂盒内包装标签
【作用与用途】详见说明书。用于全血、血清、淋巴结、脾脏、肾脏、扁桃体、肌肉、唾液、、口鼻拭子、肛拭子和环境拭子等样品中的非洲猪瘟病毒P72基因、CD2v基因和MGF 505–1R基因的检测。
【作用与用途】用于检测血液、血球粉、淋巴结、脾脏、扁桃体中非洲猪瘟病毒核酸。
1.1.1 淋巴结、脾脏、扁桃体样品 用无菌剪刀和镊子剪取待检样品2g于研钵中充分研磨，再加10mL PBS（pH 7.2）混匀（样品不足2g按1∶5比例加PBS），3,000 r/min，4℃离心5分钟，取上清液，编号备用。
1.1.4 样品保存 采集或处理好的样品在2℃～8℃条件下保存不超过72h；若需长期保存，须放置–80℃保存，避免反复冻融。
（1）待检样品、阳性对照和阴性对照的份数总和为n，取n个灭菌的1.5mL离心管，一一编号。
（5）取与上述离心管等数量的DNase–Free吸附柱和收集管，编号后将离心管中的溶液转移至DNase–Free吸附柱，为避免堵塞吸附柱，最好还是不要吸悬浮杂质。
（12）将每个吸附柱分别移入新的1.5mL离心管中，向柱中央加入100μL Buffer C，室温静置2分钟，12,000 r/min离心1分钟，离心管中液体即为模板DNA溶液。提取的DNA溶液冰上保存备用（注意：提取的DNA溶液须在2小时内进行PCR 扩增，若需长期保存须放置–80℃保存，避免反复冻融）。
从试剂盒中取出PCR反应液和Taq酶，在室温下融化，振荡均匀后，2,000rpm离心5秒。设所需PCR反应管数为n（n =样品数+ 1管阴性对照+ 1管阳性对照），每个测试反应体系配制如表2。
计算好各试剂的使用量，加入一适当体积离心管中，充分混合均匀，2,000 rpm离心10秒，向设定的n个反应管中分装23μL，转移至样品处理区。
n个PCR反应管中分别加入上述1.2.1中提取的DNA溶液2μL，反应体系为25μL，盖紧管盖，混匀，离心机瞬时离心后，将PCR 反应管转移至检测区，置于实时荧光PCR仪上，记录样品摆放顺序。
扩增条件：94℃ 3min；94℃ 5sec，60℃ 30sec（收集荧光），45个循环。ASFV荧光信号收集时设定为FAM荧光素，内标荧光信号收集时设定为VIC荧光素（如机器没有VIC荧光素，则选择HEX荧光素），参比荧光选为none。
阈值设定 根据仪器噪声情况做调整，以阈值线刚好超过阴性对照品扩增曲线 试验成立条件（质控标准）
呈现S型曲线，CT值（FAM通道）＞38.0的样品建议重做；如重做结果CT值（FAM通道）为none的判为阴性，有数值则判为阳性。
注意事项】（1）本试剂盒仅供兽医及相关专业技术人员使用，试剂盒中各组分应避免反复冻融。
（3）各区物品均为专用，不得交叉使用，避免污染；检测结束后，应立即对工作台进行清洁；工作台及各种实验用品应定期用1%次氯酸钠、75%酒精或紫外灯进行消毒。
（4）在整个检验测试过程中应注意避开交叉污染，提取核酸时应用灭菌的镊子夹取离心管；离心管开盖时应避免粘在手上或溅出，否则要立即更换手套。
（5）Buffer A有腐蚀性，切勿沾到皮肤或衣服上，一旦沾上应立即用大量清水冲洗并擦干。
（6）反应液在使用前要彻底融化，反应液与Taq酶混合后需瞬时离心将液体甩至管底；分装反应液时，应尽可能的避免产生气泡；上机前注意检查各反应管是否盖紧，以免荧光物质泄露污染仪器。
A盒（病毒DNA提取试剂）室温保存，B盒（病毒核酸检验测试试剂）–20℃保存，有效期均为12个月。
